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冠心病差异表达基因的鉴定及生物信息学分析

所属分类:医学论文 阅读次 时间:2021-12-31 10:55

本文摘要:[摘要]目的识别冠心病(CHD)的差异表达基因(DEGs),通过分析DEGs参与的生物学途径阐明CHD疾病发生涉及的细胞内通路。方法从GEO数据库下载两个已发表的CHD微阵列数据集中mRNA表达芯片的原始数据。筛选DEGs并对其进行生物信息学分析,包括Venn分析、基因本体(GO)注释分析

  [摘要]目的识别冠心病(CHD)的差异表达基因(DEGs),通过分析DEGs参与的生物学途径阐明CHD疾病发生涉及的细胞内通路。方法从GEO数据库下载两个已发表的CHD微阵列数据集中mRNA表达芯片的原始数据。筛选DEGs并对其进行生物信息学分析,包括Venn分析、基因本体(GO)注释分析、KEGG(KyotoEncy-clopediaofGenesandGenomes)细胞通路富集分析、蛋白质相互作用(PPI)网络分析。采用实时荧光定量聚合酶链反应(RT-qPCR)验证CHD病例外周血中核心DEGs的表达水平。结果共筛选出122个CHD的DEGs。GO及KEGG分析显示,这些DEGs参与了DNA转录和mRNA剪接调控。PPI网络分析显示,表达下调基因LUC7L3、HNRNPA1、SF3B1、ARGLU1、SRSF5、SRSF11、SREK1、PNISR、DIDO1、ZRSR2和NKTR位于网络中心,且这些基因均为DNA转录和RNA剪接相关基因。RT-qPCR检测证实以上基因在CHD中均表达下降,与前期芯片结果一致。结论RNA剪接在CHD的发生过程中可能发挥了重要作用。

  [关键词]冠心病;基因表达;计算生物学;RNA剪接

生物信息学

  心血管疾病是目前世界上人类死亡的主要原因之一。冠心病(CHD)是最常见的一种心血管疾病,在全球范围内每年导致超过700万人死亡[1]。2014年的一项研究显示,近1/5的男性和1/10的女性死于CHD[2-4]。据估计,未来20年CHD患病率将增加约10%[5]。CHD已成为威胁人类健康的重要疾病之一,对CHD发病机制及有效疗法的研究和探索从未停止。CHD的主要危险因素包括血脂异常、糖尿病、动脉硬化、肥胖、吸烟、久坐的生活方式、压力、年龄、男性和家族病史等[6],但其具体发病机制尚不完全清楚。既往研究显示,遗传因素在心血管疾病的发生过程中发挥了极大的作用[7]。

  CHD发生的生物学机制有多种,其中研究较为清楚的为炎症反应,炎症反应失调是CHD发生的一种潜在的生物学机制[8]。相关研究表明,基因表达差异,尤其是炎症调控相关基因表达异常与CHD的发生紧密关联[9]。除了炎症异常调控外,还有其他因素的变化参与CHD的发生。本研究旨在通过对GEO数据库中CHD发生的基因表达谱进行生物信息学分析,揭示与CHD疾病发生相关的生物学过程及信号通路,为进一步阐明CHD的发病机制提供有价值的信息,并为CHD的诊断、治疗提供新的思路。

  1资料和方法

  1.1基因微阵列数据收集CHD样本的基因表达芯片来自GEO数据库[10-12]。以“CoronaryHeartDisease”为关键词在GEO数据库中进行检索,最终在210个相关数据集中选取2个来自AffymetrixHumanGenomeU133Plus2.0Array分析平台的基因集GSE71226及GSE19339,共包含7个CHD样本和7个正常样本的表达矩阵。

  1.2原始数据预处理及差异表达基因(DEGs)鉴别

  下载原始数据,采用R语言(affy,limma包)对其进行噪声去除、分位数归一化等处理,然后筛选CHD组和正常对照组的DEGs。筛选DEGs的阈值设定为P值<0.05,且|log2(Foldchange)|≥1。最后,采用R语言(pheatmap包)对基于mRNA表达水平的组样本进行可视化层次聚类分析。

  1.3GSE71226和GSE19339中共有差异表达基因

  (co-DEGs)的Venn分析通过DrawVennDiagram线上数据库对GSE71226和GSE19339数据集中的co-DEGs进行分析[13-15]。将待分析基因列表上传到数据库,即可显示维恩图及相关共有基因列表。

  1.4基因本体(GO)和基因通路富集分析

  GO注释分析通常用于大规模转录组数据的功能研究。KEGG(KyotoEncyclopediaofGenesandGenomes)包含了多种生物化学通路。将待分析基因列表上传至DAVID生物信息学资源6.8数据库[16-17],即可显示GO及KEGG分析结果,将其下载为文本文件。最后,通过R语言(ggplot2包)可视化GO结果。

  1.5基因集富集分析(GSEA)

  将特定规格的矩阵表格加载到GSEA_4.0.2软件,通过GSEAonline进行可视化即可完成GSEA分析[18-19]。DEGs途径富集的阈值为P值<0.01。1.6蛋白质调控网络分析

  DEGs的蛋白质相互作用(PPI)网络分析通过STRING在线分析软件完成[19-20]。将基因列表上传到多个蛋白质分析菜单栏,稍后即可显示PPI结果。最后用Cytoscape软件将具体的网络图可视化。

  1.7实时荧光定量聚合酶链反应(RT-qPCR)验证

  CHD病人核心DEGs的表达水平取青岛市市立医院心脏外科10例50~80岁CHD病人和10例同龄健康人的外周血样本,使用高效血液总RNA提取试剂盒(天根生化科技(北京)有限公司,Lot#DP443)提取总RNA。用Oligo(dT)引物(Takara,cat#3806,Lot#T2301AA)在65℃条件下退火5min得到mRNA,用RevertAid逆转录酶(ThermoScientific,#EP0441)和dNTP混合物(Takara,Cat#4019,Lot#AI11312A)进行逆转录得到cDNA模板。最后使用PowerTrackSYBRGreenMasterMix(ThermoScientific,#4367659)及基因特异性引物进行RT-qPCR,检测目的基因的相对mRNA水平。

  2结  果

  2.1CHDDEGs的筛选

  从GEO数据库中收集了7例CHD病人和7例正常对照者的mRNA表达谱。根据|log2(Foldchange)|≥1、P值<0.05的筛选条件,GSE71226数据集中共鉴定出2262个DEGs,其中包含上调基因694个及下调基因1568个;GSE19339数据集中共鉴定出537个DEGs,其中包含上调基因263个及下调基因274个。对这些DEGs进行热图聚类分析结果显示,CHD组和正常对照组的基因表达模式差异显著。

  由于样本来源不同(GSE71226数据集中样本来自CHD病人和正常人的外周血;GSE19339数据集中样本分别来自经皮冠状动脉介入治疗的CHD病人冠状动脉闭塞部位的血管和正常人外周血),两个数据集中分析得到的DEGs具有一定差别。而且,两个数据集中病人信息极少,故无法分析年龄、性别和病史对CHDDEGs的影响。

  2.2co-DEGs的Venn分析

  为了较为精确地研究CHD的DEGs,本研究分析了GSE71226和GSE19339两个数据集中的co-DEGs。结果筛选得到两个数据集中共同上调基因8个及共同下调基因114个,共计122个co-DEGs。两个数据集中大部分co-DEGs均为表达下调基因,提示这些共同下调基因可能是CHD发病的关键基因。

  2.3CHDco-DEGs的GO和KEGG分析

  为了阐明DEGs的生物学功能,对以上122个co-DEGs进行了GO富集分析。结果显示,CHD中大多数的co-DEGs参与的生物学过程(biologicalprocess)为mRNA加工和剪接调控、细胞内转录调控;co-DEGs所属的细胞成分(cellcompo- nents)为核质、细胞核和细胞质;其分子功能(molecularfunctions)主要为poly(A)RNA结合、蛋白结合、DNA结合。KEGG富集分析显示,大多数co-DEGs显著富集的信号通路为剪接体。以上分析结果表明,CHD的发生与细胞整体蛋白质表达调控紊乱或RNA剪接紊乱具有重要关联。

  2.4CHDDEGs的GSEA分析

  为了进一步分析CHDDEGs可能参与的信号通路,本研究对其进行了GSEA分析。结果显示,两个GEO数据集中DEGs共同低表达的基因富集的信号通路为mRNA过程的调节及DNA损伤修复(DNAdamagerepair)。表明CHD发生过程中,涉及mRNA调节过程及DNA损伤修复途径的相关基因表达水平下降。GSEA分析结果与GO分析结果相一致。

  2.5CHDDEGs的蛋白质调控网络分析

  为了筛选CHD的关键DEGs,本研究对122个co-DEGs进行了PPI分析。结果显示,两个数据集共同下调的基因大部分处于PPI网络中间,而共同上调的基因则处于网络边缘。其中,位于PPI网络中心的基因分别为LUC7L3、HNRNPA1、SF3B1、ARGLU1、SRSF5、SRSF11、SREK1、PNISR、DIDO1、ZRSR2及NKTR。提示这些基因的异常低表达可能在CHD的发生过程中发挥了重要作用。2.6CHD关键DEGs分析筛选出的11个关键DEGs在CHD中均显著低表达。GO分析结果显示,这些关键DEGs涉及的生物学过程为DNA转录和RNA剪接体调控。表明CHD的发生与RNA剪接异常调控具有重要关系。

  2.7RT-qPCR验证

  CHD关键DEGs的表达分别收集10例CHD病人及10例正常人的外周血,对筛选出的关键DEGs的表达水平进行了RT-qPCR验证。结果显示,CHD病人外周血中这些DEGs的表达水平均较正常人显著下调。

  3讨  论

  尽管对CHD进行了40多年的基础和临床研究,但其具体发病机制仍不完全清楚。通过分析CHD发生过程中涉及的生物学途径,增加对CHD发病机制的了解,可为CHD的临床治疗及预后判断提供新思路。剪接体被证明是一种蛋白质定向金属酶[21]。

  作为真核细胞中最复杂的调控机制之一,剪接体从初级转录本中去除内含子序列,生成功能性mRNA和长链非编码RNA(lncRNA)[22],这一过程称为选择性剪接。选择性剪接是一个动态且受调控的生物学过程,受到一系列变量的影响,如顺式调控序列和反式作用因子、转录过程和DNA/RNA的甲基化等[23-24]。多项研究表明,异常可变剪接与人类疾病有关,它既可能是疾病的发生原因,也可能是疾病造成的结果[25]。

  有研究结果表明,参与剪接体正常功能的基因突变被认为是脊髓性肌萎缩、色素性视网膜炎和普瑞德-威利综合征等的关键因素[26-28]。然而,剪接因子中导致人类心脏病变的突变并不多见。到目前为止,只有剪接因子RNA结合基序蛋白20(RBM20)的突变被证实与心脏病有因果关系[29-31]。此外,相关研究结果表明,与RNA剪接相关基因在心脏病中异常表达。例如,剪切因子SF3B1在患病的人和小鼠心脏中均表达上调[32],Rbfox1基因在人类和小鼠心脏中表达下调[33]。然而,CHD病 人中DEGs一直未被明确阐述。

  本研究分析了GEO数据库的GSE71226和GSE19339数据集中CHD病人的基因表达数据,拟筛选与CHD发生密切相关的DEGs,探讨CHD基因水平的发病机制。结果显示,1.118%~2.954%(GSE71226:2.954%;GSE19339:1.118%)的基因表达水平上调,同时有1.165%~6.667%(GSE71226:6.667%;GSE19339:1.165%)的基因表达水平下调,表明CHD的发生与细胞中基因表达的变化密切相关。

  由于样本来源和各微阵列平台研究都存在差别,综合分析各种微阵列数据集可以获得更为准确的结果,故选择了两个数据集中8个共同表达上调基因及114个共同表达下调基因进行进一步分析。GO注释分析结果表明,这些DEGs参与了DNA转录和mRNA剪接调控,提示CHD的发生与细胞中RNA剪接紊乱有关。选择性剪接是一种可实质上改变基因表达模式的转录后机制。高达95%的人类基因具有多外显子可变剪接形式,表明可变剪接是人类基因组功能复杂性的最重要组成部分之一。

  本研究结果表明,大部分的CHDDEGs是可变剪接相关的基因,提示可变剪接调控在心脏病的研究中应受到更多的重视。综上所述,本文结果显示,CHD病人RNA剪接相关基因的表达水平发生显著改变,表明RNA剪接调控在CHD的发生过程中可能发挥了重要作用,但其在CHD中的具体作用机制仍有待进一步研究。本研究结果为CHD的进一步研究及高危人群的筛查提供了新的思路。

  [参考文献]

  [1]WONGND.EpidemiologicalstudiesofCHDandtheevolutionofpreventivecardiology[J].NatureReviewsCardiology,2014,11(5):276-289.

  [2]SHEPARDD,VANDERZANDENA,MORANA,etal.Is-chemicheartdiseaseworldwide,1990to2013:estimatesfromtheglobalburdenofdiseasestudy2013[J].CirculationCardio-vascularQualityandOutcomes,2015,8(4):455-456.

  [3]BENZIGERCP,ROTHGA,MORANAE.Theglobalbur-denofdiseasestudyandthepreventableburdenofNCD[J].GlobalHeart,2016,11(4):393-397.

  [4]FOLEYJRJ,PLEINS,GREENWOODJP.Assessmentofstablecoronaryarterydiseasebycardiovascularmagneticreso-nanceimaging:Currentandemergingtechniques[J].WorldJournalofCardiology,2017,9(2):92-108.

  作者:李召水1,王光静2,乔友进2,生伟2,黄强2,池一凡1

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