LED蓝光与柠檬酸对大肠杆菌的协同抗菌作用

所属分类：农业论文阅读398次时间：2020-04-30 11:30

本文摘要：摘要：为了开发新型食品抗茵方法，研究了LED蓝光辐照强度、柠檬酸质量浓度和温度3个因素对营养肉汤中大肠杆茵0157：H7抗茵性能的影响。结果表明：LED蓝光在低温(12℃)下对大肠杆菌0157：H7的抗茵效果优于室温(25℃)，且抗茵效果随着光照剂量的增加而增强;柠

　　摘要：为了开发新型食品抗茵方法，研究了LED蓝光辐照强度、柠檬酸质量浓度和温度3个因素对营养肉汤中大肠杆茵0157：H7抗茵性能的影响。结果表明：LED蓝光在低温(12℃)下对大肠杆菌0157：H7的抗茵效果优于室温(25℃)，且抗茵效果随着光照剂量的增加而增强;柠檬酸在低温下对大肠杆茵0157：H7的影响较弱，但在室温下可明显减缓其生长速率;与空白对照组相比，在使用4072.3J/cm2光照剂量的LED蓝光照射后，大肠杆茵0157：H7的数量在低温下可减少(2.60-L-_0.19)lgCFU/mL，而在室温下仅减少(O.67±0.12)lgCFU/mL;加入柠檬酸后，显著增强了LED蓝光的抗菌效果，在使用2471.0J/cm2光照剂量的LED蓝光照射后，大肠杆茵0157：H7的数量在低温下可减少(5.13±0.11)lgCFU/mL，在室温下可减少(3.08±0.11)lgCFU/mL。

　　关键词：LED蓝光;柠檬酸;大肠杆菌0157：H7;协同作用

食品与机械

　　随着消费者食品安全意识的不断提高，以及食品相关法律法规执行力的逐步增强，食品安全和食品质量正受到越来越多的关注。而在食品安全领域最让消费者关注的就是细菌、寄生虫和病毒这类能够引起食源性疾病的病原体口-e)。灭菌是最有效的食品保鲜方法之一，已被广泛地应用于食品加工领域。如今，传统的热灭菌技术在食品工业中依然占主导地位，但也存在缺陷。为了克服热灭菌的局限性，目前的研究重点在于开发新的灭菌技术[3]。不同的非热灭菌技术(如超高压[“、超声波嘲、高压脉冲电场[63、电子束辐照‘73等)都已被证实具有良好的灭菌效果。近来，发光二极管(LED)技术成为微生物灭活方面的研究热点。

　　LED是一种可以在非常窄的波长光谱内发光的半导体组件。与传统的可见光源相比，其具备能耗低、耐用性高等优点。此外，由于体积较小，LED可灵活应用于现有系统[81]。如今，LED已广泛应用于光电、电子和医疗等领域。多项研究[1”“1表明，使用LED蓝光处理悬浮状态下食源性病原体，可使其降低多个数量级。柠檬酸是一种动植物体内重要且常见的有机酸，安全无毒、无害，常在食品领域被作为食品添加剂和防腐剂使用口“。柠檬酸能够降低环境的pH，使氢离子在细胞内不断累积，从而改变细胞内的渗透压，破坏内稳态，故具备抑制细菌细胞生长和繁殖的功能[1”14]。

　　大肠杆菌0157：H7(Escherichiacoli0157：H7)是一种常见的食源性致病菌，可产生志贺毒素，引起出血性肠炎、溶血性尿毒症综合征等口“。疾病控制和预防中心(CDC)的报告称，每年由大肠杆菌0157：H7引起的食源性感染约有73000例，其中有2%～7%为严重的溶血性尿毒症综合征[1“。大肠杆菌0157：H7的食源性致病爆发主要与受污染的食物(如新鲜蔬菜、酸性饮料和肉类等)有关[I“。

　　目前，关于LED可见光抗菌的研究方向主要有可见光波长、不同的食物基质和不同的食源性致病菌等，而针对LED蓝光辐照强度与柠檬酸质量浓度对大肠杆菌0157：H7的协同抗菌的研究尚未见报道。本试验主要研究不同辐照强度的LED蓝光以及不同质量浓度的柠檬酸与LED蓝光协同作用对大肠杆菌0157：H7抗菌效果的影响，以期为食品加工生产和食品保鲜中大肠杆菌0157：H7的灭活提供新的思路。

　　1材料与方法

　　1.1材料与仪器

　　大肠杆菌0157：H7(Escherichiacoli0157：H7)菌株：江南大学生物工程学院微生物实验室;柠檬酸：分析纯，国药集团化学试剂有限公司;平板计数琼脂培养基：1g葡萄糖，15g琼脂，5g胰蛋白胨，2.5g酵母浸出粉，pH7.2，溶于l000mL去离子水中，加热煮沸溶解，锥形瓶分装，121℃高压蒸汽灭菌15rain;营养肉汤培养基：10g蛋白胨，3g牛肉浸出粉，5g氯化钠，pH7.2，溶于l000mL去离子水中，加热煮沸溶解，锥形瓶分装，121℃高压蒸汽灭菌15min;精密电子分析天平：ARll40型，奥豪斯国际贸易(上海)有限公司;恒温鼓风烘干干燥箱：DHG-9076A型，上海精宏实验设备有限公司;超净工作台：sJ—CJ一2FD型，苏州苏洁净化设备有限公司;手提式压力蒸汽灭菌锅：XFS-280型，浙江新丰医疗器械有限公司;恒温生化培养箱：SPX一200型，上海跃进医疗器械有限公司;蓝光LED灯：TD昏9型，深圳市我的照明灯饰有限公司。

　　1.2试验方法

　　1.2.1菌种的活化及悬菌液制备

　　将甘油管保藏的菌种从一20℃的冰箱中取出，放在超净工作台上，室温融化，用灭菌后的接种环取1环菌液在固体琼脂培养基上进行平板划线，于37℃培养箱中倒置培养24～48h。挑取培养基上生长旺盛的单菌落，接种于液体培养基，37℃振荡摇床培养，连续传代培养2～3次。将初始菌液10倍系列稀释，并用平板计数琼脂培养基计数，然后计算其浓度。活化好的菌液贮存于4℃的冰箱中，且时间不超过10d。

　　1.2.2LED光照系统蓝光

　　LED灯具功率为9W，光照直径为90mm。在光照试验中，光源与培养皿的间距分别为4.5，5.5，6.5cm，其对应辐照强度为141.4，85.8，26.7mW/cm2。将安装好的LED灯具固定于灯架上，且整个LED光源放置于含有内接电源的恒温控制培养箱中。

　　1.2.3LED蓝光对大肠杆菌0157：H7的抗菌试验

　　为模拟超市货架低温及室温，将试验温度设计为12，25℃。在超净工作台上，使用无菌去离子水，将初始大肠杆菌0157：H7菌液10倍系列稀释至107CFU/mI，。而后用移液管将1mL大肠杆菌0157：H7菌液移至9mL的营养肉汤中，以模拟食物基质中的营养物质。将菌悬液置于LED光照系统下的无菌培养皿(D=60ram)中。分别在12，25℃条件下，调节培养皿与LED光源间距分别为4.5，5.5，6.5cm，采用LED蓝光照射8h，同时在没有LED光照的情况下使用相同的装置进行对照试验，每间隔1h取样一次。参照Min—JeongKim等m3的方法，按式(1)计算每个细菌受到的光照剂量。E—Pt，(1)式中：E——光照剂量，J/cm2;P——辐照强度，mW/cm2;t——光照时间，S。

　　1.2.4柠檬酸对大肠杆菌0157：H7的抗菌试验

　　根据GB2760--2014<(食品安全国家标准食品添加剂使用标准》，本试验中拟定的柠檬酸质量浓度为o.2，0.5，1.0g/kg。制备柠檬酸溶液：分别取O.2，o.5，1.0g柠檬酸，溶解于1000g去离子水中，121℃高压蒸汽灭菌15rain;柠檬酸对大肠杆菌0157：H7生长影响试验：在超净工作台上，使用无菌去离子水，将初始大肠杆菌0157：H7菌液10倍系列稀释至107CFU/mL，然后用移液管将1mL大肠杆菌0157：H7菌液移至9mL的营养肉汤中，再分别加入质量浓度为0.2，o.5，1.0g/kg的柠檬酸，空白对照组加入等量的无菌去离子水。试验悬菌液放置于无菌培养皿中，分别在温度为12，25℃，且无光照条件下自然生长8h，每间隔1h取样一次。

　　1.2.5LED蓝光与柠檬酸溶液的协同抗菌试验

　　在超净工作台上，使用无菌去离子水，将初始大肠杆菌0157：H7菌液10倍系列稀释至107CFU/mL，然后用移液管将1mL大肠杆菌0157：H7菌液移至9ml。的营养肉汤中，再分别加入质量浓度为O.2，0.5，1.0g/kg的柠檬酸，空白对照组加入等量的无菌去离子水。将试验菌悬液置于LED光照系统下的无菌培养皿中，固定培养皿与LED光源的间距为5.5em(辐照强度为85.8mW/cm2)。分别在12，25℃的条件下光照8h，每间隔1h取样一次。

　　1.2.6菌落计数及抗菌效果的确定在每个取样间隔，用移液管取试验菌液和对照菌液100扯L，然后用无菌去离子水10倍系列稀释所取样品，最后取200pL稀释液于无菌培养皿中，倒人平板计数琼脂培养基。在37℃的恒温生化培养箱中倒置培养24～48h，然后进行人工菌落计数。“抗菌效果”为对照组(CK)与试验组(CM)的试验结果差异。

　　1.2.7统计学分析根据3次独立试验的试验数据，计算平均值。采用SAS8.0进行数据统计与分析，计算平均值±标准偏差及显著性分析。以试验时间为横坐标，菌落总数为纵坐标，利用Origin8.5软件制图。

　　2结果与分析

　　2.1LED辐照强度对大肠杆菌0157：H7抗菌效果的影响

　　细菌细胞中含有光敏物质——卟啉，它们能够吸收电磁光谱中特定波长的可见光。卟啉吸收光子后转变为激发态，在从激发态转变为基态的过程中将能量释放给不能吸收光子的氧化物，促使其发生化学反应产生活性氧(ROS)。产生的活性氧包括超氧阴离子、过氧化氢、羟基自由基等，这些活性氧物质通过细胞毒性方式与各种细胞成分如脂质、蛋白质和DNA等进行反应并最终导致细胞死亡。12℃时对照组中的大肠杆菌0157：H7数量变化并不明显(P>0.05)。说明在12℃下，大肠杆菌0157：H7的细胞活性较低，生长速率缓慢。在使用3种不同辐照强度的LED蓝光照射8h后，大肠杆菌0157：H7的数量均呈现下降趋势(P<0.05)。辐照强度为141.4mW/cm2的光照抗菌效果最好，曲线下降趋势最快(P<0.05)，在试验8h后，大肠杆菌0157：H7的数量相对于对照组减少了(2.60-4-0.19)lgCFU/mL。

　　而在26.7，85.8mW/cm2的辐照强度下光照8h后大肠杆菌0157：H7的数量相对于对照组仅减少了(1.17±0.13)，(1.87±o.08)lgCFu/mL。同时可观察到，抗菌效果随着辐照强度的增加而增强。25℃时对照组中的大肠杆菌0157：H7数量呈不断上升趋势(P<0.05)，在8h后增长至(8.16±0.16)lgCFU/mL。这表示在25℃下大肠杆菌0157：H7的细胞活性较强，生长速率较快。不难发现，在26.7mW/cm2的辐照强度下光照8h后，大肠杆菌0157：H7的数量仍然呈现上升趋势(P<0.05)，与对照组相比其数量减少了(1.11±0.10)lgCFu/mI。

　　说明在该辐照强度下，LED光照仅表现为减缓其生长速率的作用。而使用辐照强度为141.4mW/cm2LED蓝光照射，其抑菌效果最好，在光照剂量达到4072.3J/cm2后，大肠杆菌0157：H7的数量相对于对照组减少了(2.82±0.10)lgCFU/mL。结合图3和图4可得出，无论温度如何，LED辐照强度对于营养肉汤中的大肠杆菌0157：H7抗菌效果均有较大的影响。但在室温下LED光照对大肠杆菌0157：H7细胞数量的控制不如低温下的明显，其原因可能是在低温环境下，细胞内抑制氧化应激反应的酶活性降低，导致活性氧无法被及时清除。另一种可能的解释是在低温条件下，细胞的细胞膜流动性减弱，从而抑制细胞的能量代谢，导致细胞对LED光照更加敏感‘2…。

　　2.2柠檬酸质量浓度对大肠杆菌0157：H7抗菌效果的影响

　　对照组中大肠杆菌0157：H7的数量变化趋势较平缓(P>0.05)，培养8h后仅增加了(0.04±O.02)lgCFU/mL。在试验组中添加质量浓度为0.2，0.5，1.0g/kg的柠檬酸培养8h后，大肠杆菌0157：H7的数量与对照组相比分别减少了(o.07±O.02)，(o.15±0.01)，(0.24±o.03)lgCFU/mL。结果表明，在低温下，质量浓度为O.2，O.5，1.0g/kg的柠檬酸对于大肠杆菌0157：H7的生长影响较小。

　　3结论

　　本研究表明，LED蓝光可有效地灭活大肠杆菌0157：H7。同时食品中常用的柠檬酸，可显著提高LED蓝光对大肠杆菌0157：H7的抗菌效果。使用LED蓝光照射大肠杆菌0157：H7，当最大光照剂量为4072.3J/cm2时，大肠杆菌0157：H7数量能够有效减少(2～4)lgCFU/mL。而添加柠檬酸后，当最大光照剂量为2471J/cm2时，大肠杆菌0157：H7的数量能够减少(3～6)lgCFU/mL。

　　因此，本研究在食品保鲜领域开辟了新方法，对于天然酸性食品如水果、蔬菜、肉类等都具有适用性。由于该方法需要的光照时间较长，因而在食品加工阶段的应用可能受到一定限制，但它有可能被用作食品的保鲜与储藏。后续研究将进一步评估该方法对其他食源性病原体的抗菌效果以及对真实食物基质的抗菌效果，因为细菌病原体的行为可能因生存环境中化合物的类型和含量的差异而发生变化。

　　参考文献

　　[1]XUANWeng，SURESHN.Ensuringfoodsafety：Qualitymoni—toringusingmicrofIuidics[J]，TrendsinFoodScience&Tech—nology，2017，65：1022.

　　[2】SRIMAGALA，RAMESHT，JATINDRAKS.EffectoflightemittingdiodetreatmentoninactivationofEscherichiacoliinmilk[J].LWT-FoodScienceandTechnology，2016，71：378—385.

　　[3]LIXiang，MOHAMMEDF.Areviewonrecentdevelopmentinnon-conventionalfoodsterilizationtechnologies[J].JournalofFoodEngineering，2016，182：33—45.

　　[4]孙彦琳，苏树朋，韩立英，等.高压COz与超高压均质协同杀菌装置的研发[刀.食品与机械，2017，33(1)：84—86.

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